Polyplus 活体转染：突破体内核酸递送的高效方案

活体转染是直接在动物体内实现核酸递送的核心技术，它架起了从体外细胞研究到临床治疗转化的关键桥梁。然而，载体选择一直是这一领域的核心挑战 —— 病毒载体高效却暗藏安全隐患，非病毒载体安全却面临效率瓶颈。Polyplus-transfection® 推出的 in vivo-jetPEI® 与 in vivo-jetRNA®，正是破解这一困境的高效解决方案。

一、活体转染的载体选择困境

体内核酸递送的载体主要分为两大类，各有优劣：

病毒载体

优势：转染效率高，部分具备天然靶向性。

局限：易引发机体免疫反应，存在生物安全风险；目的基因片段大小受限；制备工艺复杂、成本高昂，实验周期长。

非病毒载体

优势：安全性更高，无生物安全顾虑；性价比突出，使用便捷，实验周期短。

局限：缺乏主动靶向性，对难转染的细胞或器官挑战较大。

正是为了兼顾安全性与高效性，以聚亚胺（PEI）为代表的阳离子聚合物载体，成为了当下活体转染研究的主流方向。

二、in vivo-jetPEI®：原理与核心优势

1. 作用原理（图一：PEI 作用原理图）

in vivo-jetPEI® 是一种线性聚亚胺（PEI），其转染过程清晰可控：

1,复合物形成：PEI 与核酸通过静电作用结合，形成稳定的纳米级阳离子复合物。

2,细胞摄取：复合物通过细胞膜表面的胞吞作用进入细胞。

3,核酸释放：进入胞内后，复合物解体，将核酸释放到细胞质中，实现后续的基因表达或沉默。

这一过程既保护了核酸不被降解，又确保了其高效进入细胞并发挥功能。

2. 核心优势

直接注射，灵活靶向：作为注射型转染试剂，可直接应用于动物体内，通过多种给药途径（图二）实现 “类靶向” 递送。例如，静脉注射（IV）后核酸在肺部高效表达，腹腔注射（IP）则主要富集于腹腔器官。

广泛适配：支持小鼠、大鼠、豚鼠、狗、猪等多种动物模型，甚至可用于虾、蚊子等独特物种。

多核酸兼容：可递送 DNA、siRNA、miRNA、mRNA、shRNA 及寡核苷酸等多种类型核酸。

操作极简：实验流程与细胞转染类似，仅需用 10% 葡萄糖溶液分别稀释核酸与试剂，混合孵育 15 分钟形成复合物后即可注射（图三），大大降低了技术门槛。

三、灵活的给药途径与操作流程

1. 多样的给药途径（图二）

in vivo-jetPEI® 支持多种注射方式，以满足不同研究目标：

全身输送：尾静脉注射（IV）、腹腔注射（IP）等，实现全身性或腹腔内器官靶向。

局部精准：肿瘤内注射、皮下注射、脑内注射、鼻腔灌输等，直接靶向特定组织或病灶。

2. 简单的操作步骤（图三）

1,用 10% 葡萄糖溶液分别稀释核酸和 in vivo-jetPEI®。

2,将两者混合，室温孵育 15 分钟，形成转染复合物。

3,直接注射到动物体内，确保最终葡萄糖终浓度为 5%。

整个过程无需复杂的试剂制备或特殊设备，大幅提升了实验效率。

四、FAQ（常见问题解答）

Q1：in vivo-jetPEI® 可以用于哪些动物？

A：它的适配性极强，除了小鼠、大鼠等常用实验动物，还可用于豚鼠、狗、猪、山羊，甚至虾、蚊子等独特物种，满足跨物种研究需求。

Q2：能递送哪些类型的核酸？

A：支持 DNA、siRNA、miRNA、mRNA、shRNA 及寡核苷酸等多种核酸，覆盖基因过表达、沉默、编辑等多种研究场景。

Q3：不同给药方式（如 IV 和 IP）有什么区别？

A：给药方式直接影响核酸的体内分布：

静脉注射（IV）：更易靶向肺部及全身循环系统；

腹腔注射（IP）：主要富集于肝脏、胰腺等腹腔器官；

局部注射（如瘤内注射）：可实现精准的病灶靶向。

Q4：操作时需要注意什么？

A：关键是用 10% 葡萄糖溶液稀释核酸和试剂，混合后室温孵育 15 分钟再注射，确保复合物稳定；同时避免反复冻融转染复合物，建议现配现用。

Q5：in vivo-jetPEI® 的安全性如何？

A：在推荐剂量下，它不会引起明显的免疫或炎症反应，对动物健康影响小，已成功应用于从基础研究到临床前试验的多个阶段。